RESUMO

OBJETIVOS: Perfluorocarbonos líquidos (PFCLs) são usados em cirurgias oftalmológicas de vítreo-retina. Os PFCLs podem causar reações inflamatórias, danos celulares e destruição da arquitetura normal da retina. Na tentativa de se evitar estes efeitos, foram desenvolvidos os alcanos semifluorinados (ASF). Este trabalho avaliou o uso potencial de um ASF, o perfluorohexiloctano (F6H8), como substituto do vítreo de longo prazo em condições controladas por meio de cultura celular. MÉTODOS: Foi feita análise da citotoxicidade indireta, na qual as células entram em contato apenas com elementos solúveis que pudessem ser eliminados pelo perfluorohexiloctano. Avaliou-se então a toxicidade direta, ou seja, a toxicidade mediada pelo contato, do perfluorohexiloctano por meio de microscopia eletrônica de varredura e a imunocitoquímica para a actina. Utilizou-se como controle, células em meio de cultura livre de qualquer tratamento, um controle positivo para toxicidade, que apresenta comprovado efeito tóxico às células, e um controle de peso que exercesse compressão mecânica similar à quantidade de perfluorohexiloctano utilizada no experimento. RESULTADO: Observou-se que o referido produto não apresenta toxicidade indireta. Os ensaios de toxicidade direta mostraram que as alterações celulares promovidas pelo perfluorohexiloctano eram similares àquelas exercidas pelo controle de peso e distintas do controle de toxicidade. CONCLUSÕES: O perfluorohexiloctano não apresenta toxicidade indireta e tem efeito mais compressivo do que tóxico sobre as células em cultura.

Descritores: Fluorocarbonetos; Cultura de células; Procedimentos cirúrgicos oftalmológicos

ABSTRACT

PURPOSE: Perfluorocarbon liquids (PFCLs) are used in vitreoretinal surgery. PFCLs may cause inflammatory reactions, cellular injury and destruction of the normal retinal architecture. In order to avoid these effects, semifluorinated alkanes (SFA) were developed. We assessed the potential use of an SFA known as perfluorohexiloctano (F6H8) as long-term vitreous replacement under controlled cell culture conditions. METHODS: We analyzed indirect cytotoxicity, where the cells only come into contact with soluble elements that can be eliminated by perfluorohexiloctano. We therefore analyzed direct toxicity (contact toxicity) of perfluorohexiloctano by means of scanning electronic microscopy and immunocytochemistry reagents for actin. Cells embedded in a treatment-free culture medium were used as control, a positive control for toxicity with an undeniably toxic effect on cells, and a weight control that produced a mechanical compression similar to the amount of perfluorohexiloctano used in the experiment. RESULTS: The indirect cytotoxicity test showed that F6H8 did not affect cell growth. Our direct toxicity tests showed that cellular alterations caused by perfluorohexiloctano were similar to those produced by the weight control and different from toxicity control. CONCLUSION: Perfluorohexiloctano does not present indirect toxicity and this product has a compressive rather than a toxic effect on cultured cells.

Keywords: Fluorocarbones; Cell culture; Ophthalmologic surgical procedures

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INTRODUÇÃO

As cirurgias oftalmológicas vítreo-retinianas tiveram grande desenvolvimento com a técnica da vitrectomia, que possibilitou ampla substituição do gel vítreo e manipulação da retina, fornecendo uma opção de tratamento eficiente para reaplicar a retina ao seu leito normal, permitindo manter sua nutrição e capacidade funcional. Este objetivo nem sempre é fácil de ser conseguido, devido ao processo de proliferação fibrosa e conseqüente tração que tende a manter a retina descolada.

O uso dos perfluorocarbonos líquidos (PFCLs) há alguns anos na oftalmologia como ferramenta para devolver a retina a sua posição anatômica de maneira menos traumática, facilitou grandemente a cirurgia de vítreo-retina. A maior gravidade específica destes líquidos promove uma estabilização hidrocinética da retina durante a cirurgia, deslocando o líquido sub-retiniano⁽¹⁾. Estas substâncias são empregadas não apenas como ferramenta intra-operatória, mas também como agentes tamponantes intra-oculares (em estudo), que inseridos durante o ato cirúrgico para posicionar a retina, permaneçam o tempo pós-operatório necessário até que se desenvolva uma adesão retiniana que impeça seu redescolamento.

Os perfluorocarbonos têm aplicação numa ampla variedade de condições cirúrgicas desde 1989, quando inicialmente foram usados no manuseio de rupturas gigantes de retina⁽²⁾. Outros usos incluem casos complicados de descolamento de retina^(3-4), vitreoretinopatia diabética⁽⁵⁾ e controle de hemorragias vítreas transoperatórias⁽⁶⁾. Os PFCLs são eficientes em manter a retina colada, em descolamentos de retina induzidos experimentalmente⁽⁷⁾.

Entre os PFCLs usados em oftalmologia temos o perfluoroctano, o perfluorodecalin, a perfluorotributilamina e o perfluorperhidrofenantreno, todos com grande capacidade de transportar e liberar tanto oxigênio (O₂) como gás carbônico (CO₂). O perfluoroctano é o mais usado no meio oftalmológico e apresenta melhor visibilidade do menisco formado na interface entre ele e a solução salina balanceada usada na cirurgia⁽⁸⁾. Os diferentes PFCLs são eficientes para reaplicar a retina⁽⁷⁾ e a decisão sobre qual perfluorocarbono usar vai se basear em uma série de considerações, como experiência do cirurgião, disponibilidade e custo⁽⁹⁾.

Alguns autores afirmam que os PFCLs deixados nos olhos dos pacientes após a cirurgia para atuarem como agentes tamponantes podem causar danos celulares⁽¹⁰⁾ e reações inflamatórias como compressão e destruição da arquitetura normal da retina com sua desorganização, alterações degenerativas dos fotoreceptores, ativação dos macrófagos na retina e à redução no número de células^(11-13). Entretanto não ficou claro se esses achados deveriam ser atribuídos a danos tóxicos ou mecânicos, observando-se um efeito progressivo proporcional ao tempo de contato dessa substância com a retina^(12,14).

Devido à limitação do uso dos PFCLs como substituto do vítreo de longo prazo-decorrente do efeito compressivo muito intenso e do discutível efeito tóxico-novos produtos foram lançados no mercado com este objetivo. São os mais recentes desenvolvimentos dos perfluorocarbonos líquidos. São chamados de "alcanos semifluorinados" (ASF) e consistem da união de um perfluorocarbono com um hidrogencarbono, o que diminui a porção fluorinada na cadeia molecular levando a uma menor densidade^(15-16).

Um dos ASF de uso oftalmológico estudados é o perfluorohexiloctano (F₆H₈). Como os outros PFCLs, os ASFs são límpidos, com índice de refração que varia entre 1,30 a 1,34, portanto próximo ao da água (1,33), o que é desejável a uma substância que deve ficar um maior tempo no olho, até que aconteça a adesão da retina ao seu leito, pois acarretaria uma mínima alteração do poder de refração ocular pós-operatório. Os ASF são solúveis em PFCL, hidrocarbonos e óleo de silicone⁽¹⁷⁾ e tem baixa viscosidade como os PFCL mantendo, portanto as características destes de fácil introdução e remoção do olho através de cânulas de diâmetro pequeno e tendência de se dispersar em pequenas bolhas.

A característica do F₆H₈ de ter menor gravidade específica, quando comparado com outros PFCLs, permitiria seu uso pós-operatório como agente tamponante, mantendo a retina na posição desejada, teoricamente com menor risco de dano celular⁽¹⁸⁾. Estudos com o perfluorohexiloctano como substituto do vítreo em olhos de coelhos não mostrou alterações retinianas importantes na microscopia ótica e eletrônica⁽¹⁹⁾ e a experiência clínica com o F₆H₈, embora limitada, mostra respostas distintas quanto ao dano retiniano e resposta inflamatória, conforme diferentes trabalhos^(20-22). Apesar desses achados iniciais, e devido ao fato do F₆H₈ ser um produto novo, estudos referentes a citotoxicidade desse composto são necessários para comprovar a sua segurança. Nesse sentido, nos propomos a avaliar o possível efeito tóxico do F₆H₈ em condições isoladas e controladas que somente a cultura celular poderia propiciar. Comparamos os possíveis efeitos do F₆H₈ com um controle de peso proporcional ao exercido por ele sobre as células, um controle de toxicidade e uma situação onde as células cresceram livres de qualquer tratamento.

 

MÉTODOS

Manutenção das células em cultura

Neste trabalho foram utilizadas células Vero, uma linhagem celular fibroblástica estabelecida a partir de células renais do macaco verde africano (Cercopithecus aethiops). Estas células são provenientes do Instituto Adolfo Lutz, SP e foram mantidas em meio Ham-F10 (Sigma) com 10% de soro fetal bovino (SFB, Nutricell) a 37^o C. As trocas de meio foram feitas sempre que ocorresse acidificação do mesmo, e os repiques foram periodicamente efetuados na medida que ocorresse a confluência do tapete celular.

Perfluorohexiloctano (F₆H₈)

O perfluorohexiloctano (Geuder AG) utilizado neste estudo apresenta as seguintes características químicas: fórmula molecular empírica C₁₄F₁₃H₁₇, fórmula resumida F₆H₈ (Geuder^®), peso molecular 432, densidade 1,35 g/ml, tensão superficial de 21(mN/m), índice de refração 1,34, viscosidade 3,2 (centistoke, a 25ºC) e ponto de ebulição de 223ºC. Quando utilizado no meio de cultivo era adicionado lentamente, para evitar a formação de pequenas bolhas.

Teste de citotoxicidade indireta

Os extratos de F₆H₈ foram obtidos colocando-se estes materiais na concentração de 2 g/ml de meio Ham F-10 (Sigma) com 10% SFB a 37ºC por 48 horas sem agitação. Depois de transcorrido esse período, o meio foi recolhido, e o F₆H₈ presente no mesmo foi descartado. Desta forma pôde ser avaliado o possível efeito de substâncias liberadas pelo F₆H₈ que poderiam estar presentes no meio de cultura. O teste de citotoxicidade indireta e obtenção dos extratos foi delineado de acordo com recomendações internacionais⁽²¹⁾.

Análise quantitativa dos extratos sobre as culturas celulares

Para a análise quantitativa dos extratos sobre as culturas celulares utilizamos o método descrito por Murakami et al⁽²²⁾. Resumidamente, 100 ml de uma suspensão de células Vero contendo 1,0 x 10⁶ células/ml em meio Ham-F10 com 10% de SFB foram inoculadas em uma placa de cultura com 96 poços (Corning^®, Cambridge, MA, USA) e cultivadas por 12 h nessas condições a 37ºC. Após este período de incubação o meio de cultivo foi removido e foi adicionado a cada poço 100 ml de meio novo com os extratos de F₆H₈. Após 12 horas de incubação a 37ºC os extratos foram removidos e as células foram lavadas com 0,1 ml de tampão fosfato salino 0,1 M (PBS) em pH 7,4 a 37ºC, fixadas em formalina 10% por 15 minutos, lavadas em PBS pelo mesmo tempo e coradas por cristal violeta 0,05% (em metanol 20%) por 15 minutos. As amostras foram então lavadas duas vezes com PBS por 30 minutos e incubados com citrato de sódio a 0,1 M (em etanol 50% com pH 4,2) pelo mesmo período. A placa com as células remanescentes foi lida em um leitor de microplacas Multiskan Bichromatic^® Versão 1,06, no comprimento de onda de 540 nanômetros. Foi usado como controle positivo, ou seja, sem efeito citotóxico, um extrato do material da própria placa de cultura (polipropileno). Em todos os experimentos foi usado n=16. Para análise estatística foi efetuada a análise da variância dos resultados obtidos (One-Way ANOVA) com nível de significância de 0,05.

Teste de citotoxicidade direta

A análise de citotoxicidade direta consiste na avaliação dos possíveis efeitos tóxicos do F₆H₈ em contato direto com as culturas de células Vero. Com esse objetivo, 1ml de suspensão de células Vero em meio Ham-F10 com 10% de SFB contendo 10⁵ células/ml foi inoculada em cada poço de placas de cultura de células com 24 poços (Corning^®). As placas foram incubadas a 37ºC por 12 horas. Após este período de incubação 0,1 ml de F₆H₈ foi adicionado sobre o tapete celular. Como controle de peso, foram utilizadas lamínulas de vidro, fazendo a compressão mecânica proporcional ao peso e área dos 0,1ml de F₆H₈ utilizado, porém inertes no que tange a toxicidade. Como controle negativo utilizou-se as células cultivadas em meio de cultura na ausência de qualquer outro tratamento. Como controle positivo de citotoxicidade, utilizou-se adesivos de silicone (Rhodiastic^®), com peso e área proporcional à ocupada pelo F₆H₈. As amostras foram colhidas fixadas e coradas, após um período de doze horas da adição de F₆H₈, momento em que os achados foram mais significativos e expressivos das transformações metabólicas e estruturais das células. Essas amostras foram então processadas para análise imunocitoquímica.

Análise imunocitoquímica

Após 12 h de contato com o F₆H₈, ou com seus respectivos controles. Após 12 h de incubação o meio de cultivo foi retirado e as placas foram lavadas com salina 0,9% em tampão fosfato (PBS) a 37ºC. O material foi fixado em solução de Karnovsky modificada (paraformaldeído 4%/glutaraldeído 0,2%, em tampão fosfato 0,1 M, pH 7,4) com Triton X 100 a 0,2% durante 30 minutos, lavadas com PBS a 37ºC e incubadas com PBS mais albumina sérica bovina (BSA, Sigma) a 1% durante uma hora a 4ºC. O material foi tratado com anticorpo monoclonal primário anti-actina (Sigma, clone AL - 40, prod. número A-4.700, Lote 0744826) diluído 1:200 e após diluído 1:40 em PBS contendo BSA a 1% durante 18 h a 4ºC em câmara úmida. Após lavagem com PBS mais BSA a 1% o material foi incubado por uma hora com anticorpo secundário antimouse IgG conjugado com FITC (Sigma) diluído 1:128 em PBS mais BSA a 1%, lavado com PBS mais BSA e montado em lâmina com Vectashield^® e vedação com esmalte. A observação foi efetuada em microscópio invertido Olimpus IX-50 usando filtros para fluorescência e fotografado com filme Kodak^® ISO 400.

Microscopia eletrônica de varredura (MEV)

O procedimento básico de ensaio em microscopia eletrônica, com as condições de cultura e controles utilizados foram os mesmo descritos anteriormente. As células foram fixadas em Paraformaldeído 4%/Glutaraldeído 2,5% (Merck KgaA, Darmstadt, Germany) em tampão fosfato 0,1 M, pH 7,4 por duas horas, então lavado em tampão fosfato, pós-fixado em tetróxido de ósmio 1% (Sigma) por 15 minutos, e desidratado em uma série de etanol. Após esse procedimento, as amostras foram desidratadas em ponto crítico (Balzers CPDO030) e recobertas com ouro em sputter (Balzers 050). As células foram observadas em microscópio eletrônico de varredura modelo JEOL JSM-5800 LV.

 

RESULTADOS

Teste de citotoxicidade indireta

O resultado da leitura da placa, não mostrou diferenças significativas do F₆H₈ sobre o crescimento celular nas diferentes condições de cultura empregadas. Desta forma, nossos resultados indicam que o F₆H₈ não libera nenhuma substância tóxica solúvel para o meio de cultura. Esses resultados podem ser observados na figura 1.

 

 

Análise imunocitoquímica

Pode-se observar nos controles negativos do experimento, células formando um tapete semiconfluente e que apresentavam seus filamentos de actina homogeneamente distribuídos e ocupando todo o citoplasma (Figura 2A). Na figura 2B observa-se detalhe da figura anterior. Na figura 2C, são apresentadas as células após 12 horas do efeito do peso das lamínulas com equivalência ao peso do F₆H₈. Observaram-se alterações na morfologia celular com retração citoplasmática, formação de prolongamentos finos e longos, com conseqüente acúmulo de actina próximo aos limites celulares. Detalhe da amostra anterior é mostrado na figura 2D. Nas células sob a ação tóxica do silicone observaram-se células com morfologia irregular, ou fragmentada, com retração citoplasmática e ausência de prolongamentos (Figura 2E). Quando cultivadas em meio de cultura em contato direto com o F₆H₈, as células apresentaram alteração na morfologia, regiões de acúmulo de actina com distribuição pontual (Figuras 2F e 2G).

 

 

Microscopia eletrônica de varredura

Nas células que cresceram sobre as lamínulas de vidro sem qualquer tratamento observou-se tapete celular semiconfluente composto por células bastante achatadas. Algumas vesículas podem ser observadas na superfície dessas células (Figura 3A e 3B). Após 12 horas do efeito do peso das lamínulas com equivalência ao peso de F₆H₈, visualizaram-se células retraídas, com morfologia bastante irregular, apresentando prolongamentos finos e longos conectando uma célula a outra (Figura 3C). Foi observado ainda, um maior aumento de vesículas e/ou microvilosidades na superfície das células (Figura 3D). Nas células cultivadas em meio de cultura em contato direto com o F₆H₈ encontramos retração citoplasmática e projeções de alguns prolongamentos (Figura 3E e 3F).

 

 

DISCUSSÃO

Os perfluorocarbonos apresentam propriedades físicas similares entre si, como um alto peso específico (maior peso em relação ao mesmo volume), imiscibilidade com a água e sangue⁽²³⁾. Alguns autores, avaliando o uso de PFCLs como substitutos do vítreo de longo prazo, concluíram que mesmo estando altamente purificados, eles são tóxicos à retina^{(12,14,24,25)}. Por outro lado, autores descrevem em seus experimentos que a retenção no vítreo de um pequeno volume de perfluorocarbono líquido depois de seu uso intra-operatório não induz resposta tóxica^{(11,23,26-27)}. Liang e Peyman⁽⁸⁾ e Mertens et al⁽¹⁾ consideram que as alterações celulares encontradas seriam decorrentes de um efeito físico, e que uma eventual toxicidade química seria conseqüência de impurezas durante a formulação do produto. Devido à limitação do uso dos PFCLs como substituto do vítreo de longo prazo⁽²⁸⁾ - decorrente do efeito compressivo muito intenso e do discutível efeito tóxico - novos produtos foram lançados no mercado com este objetivo, entre eles o F₆H₈.

A avaliação das alterações celulares sob efeito do F₆H₈ foi realizada para possibilitar uma comparação dos achados estruturais ocasionados por este SFA, atuando diretamente sobre o tapete celular versus as alterações ocasionadas por um controle, com peso e área proporcional, comprovadamente não tóxico pelo contato.

Embora o F₆H₈ tenha sido testado quanto a sua toxicidade em cultura de células e não tenha demonstrado inibir a proliferação celular⁽²⁹⁾, este produto ainda não foi avaliado tendo como parâmetro um efeito compressivo inerte. Isto permitiu uma observação paralela dos achados encontrados no experimento. O estudo das alterações celulares sob a ação destas substâncias é importante pela necessidade de se ter um produto que possa ser mantido dentro do olho no pós-operatório, por um período maior de tempo, consolidando o resultado de uma cirurgia bem sucedida, para que a retina recém reaplicada assim permaneça.

O teste de citotoxidade indireta mostra claramente que o F₆H₈ não elimina substâncias que possam ser deletérias à célula. Estes achados condizem com os dados obtidos por Meinert e Roy com diferentes culturas de células⁽³⁰⁾. Desta forma podemos afirmar de forma conclusiva que o F₆H₈ não apresenta toxicidade indireta. As alterações são, portanto, contato-dependentes e observadas após um determinado período de exposição. Durante este experimento testes realizados com tempos de contato mais curtos, entre as células com os diferentes pesos e as substâncias, mostraram alterações menos marcadas enquanto que tempos de contato maiores levavam a destruição celular que impedia qualquer análise (dados não mostrados).

Observou-se que as alterações morfológicas evidenciadas pela imunocitoquímica nas células que estiveram sob o efeito do F₆H₈ são similares aos danos promovidos pelo controle de peso e marcadamente menores que as encontradas nas células que cresceram em contato com a ação tóxica do silicone. Isso sugere que o F₆H₈ não apresenta comprometimento de natureza tóxica direta.

Danos estruturais também puderam ser observados com detalhe na microscopia eletrônica de varredura (MEV), onde as alterações foram visualizadas com maior resolução. A MEV mostrou retração citoplasmática leve e um aumento das vesículas na superfície celular nas amostras submetidas ao controle peso. Por outro lado, ocorreu uma discreta diminuição no número e na espessura dos prolongamentos das células sob efeito do F₆H₈. Em ambos os casos encontraram-se células irregulares e com prolongamentos partindo do citoplasma.

A análise conjunta dos resultados obtidos através da citotoxicidade direta e indireta aponta para efeitos nas células limitados apenas à área em contato com o F₆H₈ e estão de acordo com trabalhos previamente reportados em cirurgias experimentais em animais, que observaram alterações apenas nas partes dos tecidos em contato com a droga⁽¹⁹⁾.

Baseados em nossos resultados, pode-se considerar que o efeito mecânico do F₆H₈ e do peso equivalente ocasionado à camada celular tenham alterado o funcionamento da mesma, impedindo as trocas metabólicas normais entre as células e o meio de cultura. Esta condição permaneceu constante para todas as células durante o experimento. O fato de não se encontrarem, no entanto, diferenças marcantes nos resultados, sugerem que o F₆H₈ não apresenta outro mecanismo de ação, que não o efeito compressivo, para as alterações encontradas. Esses dados então em acordo com outros relatos previamente publicados⁽²⁹⁾.

Em conjunto, estes resultados apontam para a interpretação de que as alterações estruturais provocadas pelo F₆H₈ em olhos após cirurgias em animais de experimentação seriam principalmente em decorrência da força mecânica do mesmo, exercida sobre os tecidos no qual estão em contato e tempo-dependente. Não existindo uma provável ação tóxica dessas substâncias quando em contato com as células, em acordo com os relatos publicados por Zeana et al⁽¹⁹⁾.

A efetividade do F₆H₈ como agente para tamponar as rupturas da retina inferior e mantê-la aplicada a seu leito ainda necessita de novas investigações. A provável ausência de toxicidade e seu menor peso sugerem que se tente usá-lo como substituto do vítreo, embora os possíveis efeitos secundários e o tempo preciso de uso, sem que ocorram alterações celulares, ainda precise ser definido.

 

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Endereço para correspondência
Paulo Estacia
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Passo Fundo (RS) CEP 99010-081
E-mail: [email protected]

Recebido para publicação em 03.03.2004
Versão revisada recebida em 15.07.2004
Aprovação em 23.07.2004